Un ejemplo es el gen Dido al que dedica sus esfuerzos el grupo del Centro Nacional de Biotecnología del CSIC (CNB) dirigido por Carlos Martínez-A. Este gen aparece evolutivamente en vertebrados y se manifiesta en tres proteínas distintas: Dido1, Dido2 y Dido3. Esta última se expresa en células madre y se modula su expresión en las células especializadas. Se une a estructuras esenciales para la división celular como son el centrosoma y el complejo sinaptonémico. Alteraciones de esta proteína causan síndromes preleucémicos y tumorales y bloquean la capacidad de diferenciarse de las células madre en cualquier tipo celular específico (diferenciación) manteniendo su capacidad de división (proliferación).

En colaboración con investigadores de la Universidad de Colorado, los científicos del CNB acaban de publicar un trabajo en el que identifican al dominio PH de Dido3, y determinan su estructura cristalina a 1.8 A de resolución, como el responsable de la unión al cromosoma. Esta unión causaría modificaciones en la expresión de diferentes genes que le dan a las células madre su capacidad de dividirse y diferenciarse en células adultas.

Además de identificar la zona de la proteína que se une a las histonas que organizan los cromosomas, los investigadores han profundizado en cómo se regula su función según el momento del ciclo celular en que se encuentre la célula. Sus datos indican que cuando las células madre se diferencian, Dido3 es desplazada del cromosoma por el aumento de Dido1. Esto conlleva una disminución en la expresión de genes que dotan a las células madre de su pluripotencia.

En este mismo aspecto, durante la mitosis han observado que Dido3 pasa de estar unido a la cromatina a desplazarse hasta el huso mitótico que dispone a los cromosomas en el ecuador de la célula como paso previo a separarlos hacia los polos cuando se va a producir la división de una célula en dos. De este modo, queda descrita por primera vez a través de Dido relación entre la expresión de genes durante el desarrollo embrionario y la regulación del ciclo celular

• Gatchalian J, Fütterer A, Rothbart SB, Tong Q, Rincon-Arano H, Sánchez de Diego A, Groudine M, Strahl BD, Martínez-A C, van Wely KH, Kutateladze TG. Dido3 PHD modulates cell differentiation and division. Cell Rep 2013 Jul 2. pii: S2211-1247(13)00292-1.

En plantas, la tolerancia al arsénico es esencial para su supervivencia ya que la forma química más abundante en la tierra (el arseniato) guarda una gran similitud con el fosfato y las plantas lo incorporan fácilmente a sus células a través de los transportadores de fosfato. En el CNB, el grupo dirigido por Antonio Leyva estudia las bases moleculares de los mecanismos de percepción de arsénico en plantas con el fin de identificar y desarrollar plantas que eviten la exposición de este carcinógeno a los seres vivos.

En este trabajo, merecedor de un comentario especial por parte de los editores de la revista Plant Cell, el grupo de Leyva ha descubierto que cuando las plantas detectan el arseniato impiden de forma inmediata su captación mediante la represión y deslocalización del transportador de fosfato. Este sistema está controlado mediante la acción de una proteína represora conocida como WRKY6.

En colaboración con otros dos grupos del CNB, han podido además descubrir que el arseniato provoca la activación masiva de transposones, unos elementos del ADN móviles capaces de “saltar” de un sitio a otro del genoma en respuesta a estrés y por tanto actuar como agentes mutagénicos. Una activación que también está controlada por el represor WRKY6.

Estos resultados indican que las plantas poseen un mecanismo de percepción del arseniato que controla la activación de transposones y la incorporación del arseniato. Todo ello proporciona un sistema integrado de tolerancia y de estabilidad genómica.

• Castrillo G, Sánchez-Bermejo E, de Lorenzo L, Crevillén P, Fraile-Escanciano A, Tc M, Mouriz A, Catarecha P, Sobrino-Plata J, Olsson S, Leo Del Puerto Y, Mateos I, Rojo E, Hernández LE, Jarillo JA, Piñeiro M, Paz-Ares J, Leyva A. WRKY6 transcription factor restricts arsenate uptake and transposon activation in Arabidopsis. Plant Cell 2013 Aug 6 tpc.113.114009.

Organizado por el Servicio de Proteómica del Centro Nacional de Biotecnología del CSIC, del 7 al 11 de octubre de 2013 se va a celebrar en Madrid el IV Curso de Proteómica Cuantitativa.

Este curso de Proteómica Cuantitativa pretende ofrecer una exhaustiva visión teórica y práctica de algunas las aproximaciones experimentales más utilizadas en proteómica diferencial. Como puede comprobarse en el programa del curso, a lo largo de cuatro días se analizarán en detalle técnicas como el marcaje isotópico diferencial con reactivos como ICPL (Isotope-coded protein labelling) y iTRAQ, seguido de fraccionamiento por cromatografía líquida y análisis mediante espectrometría de masas y técnicas de proteómica cuantitativa dirigida (MRM).

Las clases teóricas se combinarán con clases prácticas que permitirán al investigador familiarizarse con estas técnicas y descubrir todo su potencial La proteómica permite la identificación y caracterización de las proteínas presentes en proteomas y subproteomas complejos

La información más actualizada puede encontrarse en la página web del IV Curso de Proteómica Cuantitativa.

• Organizado por: CNB-CSIC, ProteoRed y Bruker.
• Patrocinado por: AB SCIEX.

El Campus de Biociencias de Madrid Norte es un proyecto del área de las Ciencias de la Vida y de la Salud del Campus de Excelencia UAM+CSIC formado por los principales agentes responsables de la I+D+ i en biociencias en el área norte de Madrid. El objetivo del Campus es crear un entorno de actividad científica a través de la colaboración entre sus agentes y empresas relacionadas para fomentar el desarrollo de colaboraciones tecnológicas en Ciencias de la Vida y la Salud.

La principal función del Director/a será poner en marcha, dirigir y administrar el Campus. Será el responsable de negociar con los diferentes agentes involucrados y promover colaboraciones nacionales e internacionales en línea con la estrategia del Campus de Excelencia.

Requisitos:

• Licenciado/a o doctor/a. Se valorará la formación en Ciencias de la Vida.
• Experiencia demostrable en gestión, promoción, evaluación y coordinación de actividades de I+D+i en ciencias y tecnología y en transferencia de resultados. Se valorará experiencia científica.
• Experiencia en planificación y gestión estratégica de Centros de Excelencia públicos o privados, fundaciones de investigación, institutos de saludo pública o entidades públicas.
• Liderazgo y visión estratégica.
• Conocimiento del entorno científico empresarial, especialmente en el ámbito de la salud. Se valorará positivamente experiencia en el sector de la biotecnología y del sector de la salud en España, y en Madrid, en particular.
• Conocimiento de las políticas nacionales e internacionales en biociencias y en I+D+ i.
• Conocimiento de la red nacional e internacional de instituciones públicas y privadas en biociencias
• Inglés y Español fluidos.

Se precisa incorporación inmediata, dedicación completa y disponibilidad para viajar.

Modalidad contractual: contrato por obra o servicio.

Jornada: completa.

Retribución: a convenir en función de la valía el candidato seleccionado.

La selección de los candidatos se realizará mediante la valoración del curriculum, entrevista personal y la valoración de la memoria estratégica que se solicitará en la primera entrevista.

Fecha límite para entrega de candidaturas: jueves 31 de julio hasta las 14.00 horas.

Dirigir las solicitudes por correo electrónico a o por correo postal a la FUAM, Calle Einstein, nº 13, planta 2ª. 28049 MADRID.

Indicar referencia: DCBNM.

*El puesto podrá declararse desierto si la FUAM considera que ninguno de los candidatos cumple los requisitos.

Para luchar contra las infecciones, nuestro organismo cuenta con un tipo de moléculas conocidas como interferones que consiguen bloquear la multiplicación de los virus y activar a los glóbulos blancos que atacan tanto a estos como a las bacterias. En su laboratorio del Centro Nacional de Biotecnología del CSIC (CNB), el grupo dirigido por Carlos Ardavín estudia el funcionamiento de unas células inmunitarias que producen interferón, las células dendríticas.

A parte del efecto contra virus y bacterias, hace años se descubrió que “las células dendríticas son clave en la inmunidad contra el hongo Candida albicans” explica Ardavín, quien acaba de publicar en la revista Immunity que para que puedan actuar contra dicho hongo es necesario que las células dendríticas produzcan interferón de tipo I (α y β). Sólo así, las células dendríticas reducen la mortalidad en infecciones causadas por Candida albicans en ratones.

Profundizando en el mecanismo molecular, los científicos del CNB han descubierto el papel esencial de dos proteínas llamadas Dectin-1 y Dectin-2 para que las células dendríticas produzcan Interferón β cuando el organismo sufre una infección por dicho hongo. Sin ellas, no se produce el interferón y, entre otras cosas, los neutrófilos encargados de luchar contra la infección no se desplazan hasta el lugar donde se encuentra C. albicans.

• Del Fresno C, Soulat D, Roth S, Blazek K, Udalova I, Sancho D, Ruland J, Ardavín C. Interferon-β production via Dectin-1-Syk-IRF5 signaling in Dendritic Cells is crucial for immunity to C. albicans. Immunity 2013 Jun 27;38(6):1176-86.

Produciéndose cerca de 10.000 alteraciones diarias en el genoma de cada célula, el trabajo que hacen proteínas reparadoras del ADN como las que estudia en su laboratorio del Centro Nacional de Biotecnología del CSIC (CNB) el grupo dirigido por el biofísico Fernando Moreno-Herrero es tremendamente importante.

Junto a bioquímicos de la Universidad de Bristol, han publicado en la revista PNAS el mecanismo de exploración o escaneo que utiliza la proteína AddAB en el proceso de reparación de un corte de la doble hélice de ADN. Como nos explica Moreno-Herrero, reparar los daños en esencial ya que su acumulación puede acabar provocando "la muerte celular o incluso degenerar en una célula cancerígena".

Con anterioridad, el grupo del CNB había demostrado que para que la proteína AddAB recorriera el cromosoma separando las dos hebras necesita estar unida a unas secuencias del genoma llamadas Chi. Ahora además, utilizando la técnica de pinzas magnéticas, han sido capaces de estudiar molécula a molécula cómo recorre el ADN, a qué velocidad y hasta las pausas que hacen. Sus resultados muestran que las características de la translocación a lo largo del ADN dependen del contenido en citosina y guanina y de la presencia de las secuencias Chi.

Desde el CNB, la investigadora postdoctoral Carolina Carrasco nos explica que en su estudio han podido ver "que cuando la proteína encuentra una verdadera secuencia Chi, realiza una pausa en esta posición después de la cual reinicia nuevamente su trayectoria". Y es que cuando AddAB se encuentra con secuencias parecidas a Chi, también se detiene en un intento fallido de reconocer estas pseudo-Chi, siendo la duración de las pausas en estos casos menores.

Basándose en la capacidad de dicha proteína de reconocer específicamente las secuencias Chi, los investigadores han propuesto un modelo mecánico para explicar el origen de ambas pausas. La forma de la pausa y el aparente cambio de velocidad después de la misma actúan cómo un filtro selectivo cuando se encuentra ante una secuencia Chi genuina.

• Carrasco C, Gilhooly NS, Dillingham MS, Moreno-Herrero F. On the mechanism of recombination hotspot scanning during double-stranded DNA break resection. PNAS June 24, 2013.

Esta práctica está basada en una visita que nos hicieron a principios de este año los alumnos del Colegio Rafael Alberti de Coslada. Si te interesa, esta sencilla práctica dirigida a alumnos educación primaria se puede descargar en pdf (2,37 MB).

Por su presupuesto y volumen de actividad, la Fundación "la Caixa" figura entre las diez fundaciones más importantes del mundo. Desde 1982, mantiene diversos programas para cursar estudios de postgrado tanto en España como en el extranjero.

En este sexto año consecutivo, la Fundación "la Caixa" convoca dos contratos predoctorales de personal investigador en formación para desarrollar un doctorado en Biomedicina en el Centro Nacional de Biotecnología del CSIC, el mayor centro español y uno de los centros líderes en el mundo en el área de Biotecnología, Biología Molecular y Biomedicina.

Las bases de la convocatoria de este año, publicadas en el Boletín Oficial del Estado del 24 de junio de 2013, pueden descargarse como documento pdf (4,61 MB).

Los estudiantes deberán aportar la documentación acreditativa de estar admitido en un programa de doctorado expedido por el responsable de dicho programa.

Las solicitudes pueden enviarse hasta el 1 de julio de 2013.

• Listado provisional de admitidos y excluidos (subsanación de errores hasta el 13 de julio de 2013).
• Listado definitivo de admitidos y excluidos.
• Valoración provisional de méritos del concurso.
• Listado definitivo.
• Resolución definitiva.

A través del Centro Nacional de Biotecnología del CSIC, que alberga la unidad de procesamiento de imágenes en microscopía electrónica líder en Europa, España se ha integrado en la mayor infraestructura europea de investigación en biología estructural (Instruct, en sus siglas en inglés).

Gracias al acuerdo firmado entre el Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC) e Instruct, la comunidad científica española tendrá acceso a una red de infraestructuras científicas con capacidades en tecnologías clave para el estudio de la biología estructural de Alemania, Bélgica, Francia, Israel, Italia, Holanda, Portugal, Reino Unido y República Checa. Además, los españoles podrán participar activamente y de forma prioritaria en la preparación y puesta en marcha de nuevos proyectos europeos.

Los científicos españoles podrán participar activamente y acceder a múltiples infraestructuras Europeas para el desarrollo de sus proyectos de investigación.  “El objetivo de esta iniciativa es unir los esfuerzos de varios países que comparten sus instalaciones para avanzar en biología y biomedicina. Los investigadores tendremos acceso a tecnologías de vanguardia, desde sincrotrones hasta grandes instalaciones de resonancia magnética nuclear”, ha señalado el investigador del CSIC José María Carazo.

El Centro Nacional de Biotecnología del CSIC coordina el proyecto en el ámbito del procesamiento de imagen en microscopía electrónica y una de sus misiones será involucrar a diversas instituciones y potenciar sinergias con otros centros de investigación e instalaciones singulares, como por ejemplo, el sincrotrón ALBA, el acelerador de partículas instalado en Cerdanyola del Vallès (Barcelona).

“Supone un gran reconocimiento internacional y nuestro compromiso será el desarrollar la nueva generación de infraestructuras en procesamiento de imagen en microscopía electrónica. Proporcionaremos apoyo a los biólogos experimentales y ayudaremos a maximizar la obtención de conocimiento biológico a partir de imágenes de microscopía. Es todo un honor y un reto el saber que la tecnología que diseñe nuestro grupo será la que se use a nivel europeo en el marco de Instruct”, ha precisado Carazo.

Instruct, la infraestructura europea de investigación en biología estructural, es una de las 48 que forman parte de la hoja de ruta del Foro Estratégico Europeo para las Infraestructuras de Investigación (ESFRI, en sus siglas en inglés). Estas grandes infraestructuras científicas internacionales constituyen la columna vertebral del Espacio Europeo de Investigación y son motor del desarrollo económico de los países involucrados en su construcción, favoreciendo la creación de economías más competitivas e impulsando la recuperación económica en momentos de crisis.

KEYNOTE SPEAKER: From his postdoctoral at the University of Edinburgh to his present position at the University of Kansas Medical School, Professor Joe Lutkenhaus pioneering work has been crucial for the discovery and study of divisome components.  He has received several academic recognitions, among them the prestigious Louisa Gross Horwitz Prize in 2012.

THE PROGRAMME: We have gathered Spanish microbiologists working on bacterial cell division and some investigators whose work, coming from fields different from microbiology, provide important advances to study bacterial division in the light of novel synthetic biology approaches.

VENUE: At the main CNB lecture room. C/ Darwin nº3. 28049 Madrid. Tel: +34 91 585 45 00

Attendance is free but room capacity is limited.

ORGANIZATION: Miguel Vicente (scientific) and Moira Torrent (technical)

WORKSHOP PROGRAMME (pdf)

10:00 - 10:30: José M. Valpuesta (CNB, Madrid) The folding pathway of actin and tubulin mediated by an assembly line of molecular chaperones

10:30 - 11:00: Luis M. Liz-Marzán (CIC biomaGUNE) Nanoplasmonic Biodetection

11:00 - 11:30: Miguel A. de Pedro (CBMSO, Madrid) Cell wall elongation and septation: Who leads whom?

11:30 - 12:00: Juan Ayala (CBMSO, Madrid) Endopeptidases and carboxypeptidases in bacterial cell cycle. How many and for what purpose?

12:00 -12:30 COFFEE BREAK

12:30 - 13:15: Joe Lutkenhaus (U. Kansas) Min system and the Z ring
   
13:15 - 13:45: Jesús Mingorance (Hospital La Paz, Madrid) FtsA, bacterial division and the quest for a role

14:00 - 15:30 LUNCH

15:30 - 16:00: Marisela Vélez (ICP, Madrid) Looking at individual FtsZ filaments on surfaces in solution: what we have learned so far

16:00 - 16:30: Germán Rivas (CIB, Madrid) Macromolecular interactions of FtsZ: from physical biochemistry to reconstructing minimal divisomes in cell-like environments

16:30 - 17:00: José M. Andreu (CIB, Madrid) Targeting bacterial cell division protein FtsZ with small molecules

17:00 - 17:30: Paulino Gómez-Puertas (CBMSO, Madrid) In silico design of new antimicrobial compounds directed against FtsZ

17:30 - 18:00: Francisco Monroy (U. Complutense, Madrid) Membrane mechanics of bacterial division: a connection to Z ring mechanistic

18:00 - 18:30: Miguel Vicente (CNB, Madrid) Zipping the Z